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@HAW_Muenchen_06


Vorlesungsverschiebungen

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@Vorlesung_FK06


CANTER

Kurzbeschreibung:


Centrum für Angewandtes Tissue Engineering und Regenerative Medizin / Center for Applied Tissue Engineering and Regenerative Medicine

Laborausstattung:


Folgende Geräte sind aktuell am CANTER vorhanden:
• Zellbiologische Grundausstattung: Sicherheitswerkbänke für die Zellkultur (S1, S2), Inkubatoren, Autoklaven, Zellmikroskop etc.
• Molekularbiologische Grundausstattung: Zentrifugen, Multiplatten-Reader, Gel-Dokumentation
• 3D-Drucker (Ultimaker 2, Form 2)
• Mehrere Bioprinter zum verdrucken Zell-beladener Hydrogele (Eigentwicklung)
• Kryotom zur Präparation von Gewebeproben
• Inverses Fluoreszenzmikroskop mit strukturierter Beleuchtung für das Live-Cell-Imaging (Time-Laps)
• Rasterkraftmikroskope (Nanowizard, Nanoscope IIIa, MFP 3D), z. T. mit inversen Fluoreszenzmikroskopen gekoppelt
• Mikro-Universprüfgerät (Mach 1)

Darüber hinaus stehen in den am CANTER beteiligten Laboren weitere Methoden und Geräte, zur Verfügung: u. A. ein großes Spektrum an molekular- und zellbiologischen Techniken, weitere 3D-Drucker, darunter ein 2-Photonen-Stereolithographie-Drucker, sowie eine Laser-Sinter-Anlage, Zugprüfmaschinen, Konfokal-, SHG- und STED-Mikroskope, ein Rasterelektronenmikroskop, sowie leistungsfähige Rechner für die Simulation.

Themengebiete für Abschluss- und Projektarbeiten oder mögliche Kooperationen:


Ziel des CANTER ist es, ausgehend vom Verständnis der Struktur-Funktions-Beziehungen in gesundem und pathologischem Gewebe, Technologien zu entwickeln, die es ermöglichen im Labor Gewebeersatzmaterialien herzustellen, die individuell auf die Bedürfnisse der Patienten abgestimmt sind. Neben Zell- und molekularbiologische Methoden, generativen Fertigungsverfahren und der Werkstofftechnik, werden dazu auch analytische Verfahren benötig, die es ermöglichen Gewebe und Gewebekonstrukte hinsichtlich ihrer mikroskopischen Struktur und ihrer biologischen Funktionalität zu Untersuchen. Am CANTER werden daher Projekt-, Abschluss- und Promotionsarbeiten von Studierenden und Absolventen der Bachelor- und Masterstudiengänge Bioingenieurwesen, Mechatronik, Physikalische / Chemische Technik, Mikro- und Nanotechnik, Photonik sowie Humanmedizin durchgeführt. Die Themengebiete reichen von der Herstellung und Erprobung von Biotinten, über die Entwicklung neuer 3D-Druckverfahren und Bioreaktoren, bis zur biophysikalischen Charakterisierung von Zellen und Gewebe.

Aktuell sind Arbeiten auf folgenden Gebieten besetzen:
• Optimierung von Hydrogelen für das 3D-Drucken bzw. Vergießen von Zell-beladenen Gelen sowie molekular- und zellbiologische Charakterisierung der verdruckten Zellen
• Entwicklung von Bioreaktoren für die 3D Zellkultur
• Charakterisierung von Struktur und mechanischen Eigenschaften von gesundem und pathologischen Gewebe mittels Rasterkraftmikroskopie

Kooperative Promotionen:
• Herstellung eines 3D Gewebemodells zur Untersuchung und gezielten Stimulation von Zellmigration und Zellwachstum entlang von E-Modul Gradienten der Extrazellulären Matrix, Amelie Erben, TU München, laufend
• Entwicklung einer 3D-gedruckten Mikrofluidik zur Analyse des Einflusses nanoskaliger Lamellen auf Fluiddynamik in Blutgefäßen, Benedikt Kaufmann, TU München, laufend
• Investigating the effect of alpha10 integrin and heperan-sulfates on the biomechanical properties and regeneration potential of articular cartilage using atomic force microscopy, Lutz Fleischhauer, LMU, laufend
• Bestimmung des Elastizitätsmoduls an intaktem und degeneriertem Knorpel mittels Nano- und Mikroindentationsmessung, Bastian Hartmann, LMU, laufend
• Laser-induced transfer of human mesenchymal cells using near infrared femtosecond laser pulses for the precise configuration of cell nichoids, Jun Zhang, Universität Regensburg, laufend
• Integration der Laser-Doppler Vibrometrie in den Bioprinting Prozess zur Erzeugung dreidimensionaler bioaktiver Konstrukte, Sascha Schwarz, TU München, laufend
• Mechanotransduction on the single cell level using AFM based single cell force spectroscopy (SCFS) for mechanical stimulation, Stefanie Kiderlen, LMU-München, laufend
• Kultivierungssysteme für 3D-Kulturen im Tissue Engineering, Jakob Schmid, LMU München, laufend
• Streptococcus pneumoniae TIGR4 pilus-1 biogenesis and functional-biomechanical aspects of adhesion molecule RrgA during interaction with the host, Tanja Becke, TU-München, laufend
• Investigation of the molecular and biophysical mechanisms of prostate cancer cell interactions with bone marrow-derived proteins and stem cells, Ediz Sariisik, LMU-München, abgeschlossen 2016
• Structure-function relationship of the cartilage extracellular matrix assessed by atomic force microscopy, Carina Prein, Ludwig-Maximilians-Universität München, abgeschlossen 2016
• Mechanochemical Stability of Covalent Bonds – Investigation with Atomic Force Microscope and Quantum Chemical Calculations, Michael Pill, Christian-Albrechts-Universität zu Kiel abgeschlossen 2015
• Single-Molecule Force Spectroscopy of Covalent Bonds – Comparison of the Dynamic and the Force-Clamp Approach, Sebastian Schmidt, Christian-Albrechts-Universität zu Kiel, abgeschlossen 2011

In Zusammenarbeit mit externen Partnern durchgeführte Projekte:


Das CANTER wurde 2011 als Kooperationsprojekt von LMU, HM und TUM gegründet. Es stützt sich auf ein etabliertes Kooperationsnetzwerk, von IngenieurInnen, Medizinern und NaturwissenschaftlernInnen mit gemeinsamen Forschungsprojekten, Lehrveranstaltungen und gemeinsam betreuten Abschlussarbeiten und Promotionen. Die beteiligten Wissenschaftlerinnen und Wissenschaftler sind u.A.:
A. Aszodi, ExperiMed, LMU
W. Böcker, Klinik für Allgemeine, Unfall- und Wiederherstellungschirurgie, LMU
H. Clausen-Schaumann, Nanoanalytik und Biophysik, HM
D. Docheva , Labor für experimentelle Unfallchirurgie, Universität Regensburg
A. Fuchsberger, Labor für Fertigungstechnik, HM
T. Hellerer, Labor für Multi-Photonen-Mikroskopie, HM
H. Huber, Laserzentrum, HM
R. Huber, Bioverfahrenstechnik, HM
U. Koch, Werkstofftechnik, HM
HG. Machens, Klinik und Poliklinik für Plastische Chirurgie und Handchirurgie, KRI, TUM
J. Roths, Photonik, HM
M. Rebhan, Labor für 3D-Nanostrukturen und nano-3D-Druck, HM
M. Schieker, ExperiMed, LMU
A. F. Schilling, Klinik für Unfallchirurgie, Orthopädie und Plastische Chirurgie, UMG
A. Schlüter, Konstruktionstechnik, HM
E. Steinhauser, Werkstofftechnik, HM
S. Sudhop, CANTER, HM
C. Tille, Verbundlabor Konstruktion und CAx (KCA), HM
U. Wagner, Modellbildung und Simulation, HM

Das CANTER kooperiert mit Unternehmen aus den Bereichen Biotechnologie/Nanobiotechnologie, Werkstofftechnik/Biomaterialien, Mikrosystemtechnik, Sensorik, Optik/Lasertechnik, Engineering und Medizintechnik.

WissenschaftlerInnen des CANTER sind an zahlreichen Forschungsprojekten beteiligt, u. A. am vom Bayerischen Wissenschaftsministerium geförderten Forschungsschwerpunk Herstellung und biophysikalische Charakterisierung von dreidimensionalen Geweben und der DFG Forschergruppe FOR 2407 Exploring articular cartilage and subchondral bone degeneration and regeneration in osteoarthritis - ExCarBon.


CANTER Publications

2019

J. Schmid, S. Schwarz, M. Fischer, S. Sudhop, H. Clausen-Schaumann, M. Schieker, and R. Huber: A laser-cutting based manufacturing process for the generation of three-dimensional scaffolds for tissue engineering using Polycaprolactone/Hydroxyapatite composite polymer, Journal of Tissue Engineering, (2019), 10, 1 –11 , DOI: 10.1177/2041731419859157 (open access)

T. D. Becke, S. Ness, B. K. Kaufmann, B. Hartmann, A. F. Schilling, S. Sudhop, M. Hilleringmann, and H. Clausen-Schaumann: Pilus-1 Backbone Protein RrgB of Streptococcus Pneumoniae Binds Collagen I in a Force Dependent Way, ACS Nano, 2019, 13(6), 7155-7165 DOI:10.1021/acsnano.9b02587

M.F. Pill, A.L.L. East, D. Marx, M.K. Beyer, and H. Clausen-Schaumann: Mechanical activation drastically accelerates amide bond hydrolysis, matching enzyme activity, Angewandte Chemie Int. Ed., (2019), 58 (29), 9787-9790 DOI: 10.1002/anie.201902752 and Angewandte Chemie , (2019), 58 (29), 9787-9790 DOI: 10.1002/ange.201902752

Ch. Krug, A.Beer, B. Hartmann, C. Prein, H. Clausen‐Schaumann, Th. Holzbach, A. Aszodi, R. Giunta, M. Saller, E. Volkmer: Fibrin glue displays promising in vitro characteristics as a potential carrier of adipose progenitor cells for tissue regeneration, Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine, (2019), 13, 359-368, DOI: 10.1002/term.2778

P. Alberton, H. Dugonitsch, B. Hartmann, P. Li, Z. Farkas, M. Michael Saller, H. Clausen-Schaumann, A. Aszodi: Aggrecan hypomorphism compromises articular cartilage biomechanical properties and is associated with increased incidence of spontaneous osteoarthritis, International Journal of Molecular Sciences, (2019), 20(5), 1008; DOI: 10.3390/ijms20051008 (open access)

S. Kiderlen, Ch. Polzer, J. O. Rädler, D. Docheva, H. Clausen-Schaumann, S. Sudhop: Age related changes in cell stiffness of tendon stem/progenitor cells and a rejuvenating effect of ROCK-inhibition, Biochemical and Biophysical Research Communications, (2019), 509(3), 839-844, DOI: 10.1016/j.bbrc.2019.01.027 (open access)

2018

J. Schmid, S. Schwarz, R. Meier-Staude, S. Sudhop, H. Clausen-Schaumann, M. Schieker, R. Huber: A perfusion bioreactor-system for cell seeding and oxygen-controlled cultivation of 3D-cell cultures, Tissue Engineering C, (2018), 24(10), 585-595, DOI: 10.1089/ten.TEC.2018.0204 (open access)

T. D. Becke, S. Ness, S. Sudhop, H. E. Gaub, M.Hilleringmann, A. F. Schilling, and H. Clausen-Schaumann: Covalent Immobilization of Proteins for the Single Molecule Force Spectroscopy, J. Vis. Exp., (2018), 138, e58167, DOI: 10.3791/58167 (open access)

J. Zhang, B. Hartmann, J. Siegel, G. Marchi, H. Clausen-Schaumann, S. Sudhop, H. P. Huber: Sacrificial-layer free transfer of mammalian cells using near infrared femtosecond laser pulses, PLoS ONE, (2018), 13(5): e0195479. DOI: 10.1371/journal.pone.0195479 (open access)

T. Becke, S. Ness, R. Gürster, A. Schilling, A.M. di Guilmi, S. Sudhop, M. Hilleringmann, and H. Clausen-Schaumann: Single Molecule Force Spectroscopy Reveals Two-Domain Binding Mode of Pilus-1 Tip Protein RrgA of Streptococcus Pneumoniae to Fibronectin, ACS Nano, (2018), 12(1), 549–558, DOI: 10.1021/acsnano.7b07247 (open access)

2017

S. Dex, P. Alberton, L. Willkomm, Th. Söllradl, S. Bago, S. Milz, M. Shakibaei, A. Ignatius, W. Bloch, H. Clausen-Schaumann, C. Shukunami, M. Schieker, D. Docheva: Tenomodulin is Required for Tendon Endurance Running and Collagen I Fibril Adaptation to Mechanical Load, EBioMedicine, (2017), 20, 240-254. DOI: 10.1016/j.ebiom.2017.05.003 (open access)

O. Holz, Oliver, D. Apel, P. Steinmetz, E. Lange, S. Hopfenmuller, K. Ohler, S. Sudhop, and M. Hassel: Bud detachment in hydra requires activation of fibroblast growth factor receptor and a Rho-ROCK-myosin II signaling pathway to ensure formation of a basal constriction, Developmental Dynamics, 246(7), 502-516, (2017), https://doi.org/10.1002/dvdy.24508 (open access)

XY. Dai, J. Liu, HY. Zheng, J. Wichmann, U. Hopfner, S. Sudhop, C. Prein, Y.Shen, HG. Machens, AF. Schilling: Nano-formulated curcumin accelerates acute wound healing through Dkk-1-mediated fibroblast mobilization and MCP-1-mediated anti-inflammation, NPG Asia Materials, 9, e368 , (2017), https://doi.org/ 10.1038/am.2017.31 (open access)

G. Marchi, V. Baier, P. Alberton, P. Foehr, R. Burgkart, A. Aszodi, H. Clausen-Schaumann, J. Roths: Microindentation Sensor System Based on an Optical Fiber Bragg Grating for the Mechanical Characterization of Articular Cartilage by Stress-Relaxation, Sensors and Actuators B, 252, 440–449, (2017), https://doi.org/10.1016/j.snb.2017.05.156

T. Gronau, K.Krüger, C.Prein, A.Aszodi, I.Gronau, R.V. Iozzo, F.C. Mooren, H.Clausen-Schaumann, J.Bertrand, Th.Pap, P.Bruckner, R.Dreier: Forced exercise-induced osteoarthritis is attenuated in mice lacking the small leucine-rich proteoglycan decorin, Ann. Rheum. Dis., (2017), 76, 442-449. http://dx.doi.org/10.1136/annrheumdis-2016-209319

2016

R. Reuten, T. Patel, M. McDougall, N. Rama, D. Nikodemus, B. Gibert, JG. Delcros, C. Prein, M. Meier, S. Metzger, Z. Zhou, J. Kaltenberg, K. McKee, T. Bald, T. Tueting, P. Zigrino, V. Djonov, W. Bloch, H. Clausen-Schaumann, E. Pöschl, P. Yurchenco, M. Ehrbar, P. Mehlen, J. Stetefeld, and M. Koch, Structural decoding of netrin-4 reveals a regulatory function towards mature basement membranes, Nature Communications, (2016), 7, 13515. http://dx.doi.org/10.1038/ncomms13515 (open access)

M. F. Pill, K. Holz, N. Preußke, F. Berger, H. Clausen-Schaumann, U. Lüning and M. K. Beyer, Mechanochemical Cycloreversion of Cyclobutane Observed at the Single Molecule Level, Chemistry - A European Journal, (2016), 22, 1–7, http://dx.doi.org/10.1002/chem.201600866

T Gronau, T,K Kruger, RV Iozzo, A Aszodi, H Clausen-Schaumann, FC Mooren, FC J Bertrand, T Pap, T, P Bruckner, R Dreier: Altered Matrix Stiffness in Decorin-Null Articular Cartilage Results in Improved Resitance to Osteoarthritis Induced by Forced Exercise, Osteoarthritis and Cartilage, (2016), 24, S134-S134 (abstract only)

M. Pill, A. Kersch, H. Clausen-Schaumann, and M. K. Beyer, Force dependence of the infrared spectra of polypropylene calculated with density functional theory, Polymer Degradation and Stability, (2016), 128, 294–299, http://dx.doi.org/10.1016/j.polymdegradstab.2016.03.025 (full paper)

C. Prein, N. Warmbold, Z. Farkas, M. Schieker, A. Aszodi, and H Clausen-Schaumann: Structural and Mechanical Properties of the Proliferative Zone of the Developing Murine Growth Plate Cartilage Assessed by Atomic Force Microscopy, Matrix Biology, (2016), 50, 1-15, http://dx.doi.org/10.1016/j.matbio.2015.10.001 (open access)

M. Kamper, N. Hamann, C. Prein, H Clausen-Schaumann, Z. Farkas, A. Aszodi, A. Niehoff, M. Paulsson, and F. Zaucke: Early changes in morphology, bone mineral density and matrix composition of vertebrae lead to disc degeneration in aged collagen IX -/- mice, Matrix Biology, 49, 132-143, (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.matbio.2015.09.005

Structural and Mechanical Cues in Cartilage Morphogenesis, C. Prein, H. Clausen-Schaumann, A. Aszodi: Biophys. J., (2016), 110 (3), 498a (abstract only), http://dx.doi.org/10.1016/j.bpj.2015.11.2664

2015

E. Sarıısık, C. Popov, J. P. Müller, D. Docheva, H. Clausen-Schaumann, and Martin Benoit: Processing force spectroscopic data to decode membrane and cyto-skeleton anchored receptor-ligand interactions, Biophys. J., (2015), 109, 1330-1333, http://dx.doi.org/10.1016/j.bpj.2015.07.048 (full paper open access)

E. Aro, A. M. Salo, R. Khatri, M. Finnilä, I. Miinalainen, R. Sormunen, O. Pakkanen, T. Holster, R. Soininen, C. Prein, H. Clausen-Schaumann, A. Asźodi, J. Tuukkanen, K. I. Kivirikko, E. Schipani, and J. Myllyharju: Severe Extracellular Matrix Abnormalities and Chondrodysplasia in Mice Lacking Collagen Prolyl 4-Hydroxylase Isoenzyme II in Combination with a Reduced Amount of Isoenzyme I, J. Biol. Chem., (2015), 290 (27), 16964–16978, http://dx.doi.org/10.1074/jbc.M115.662635

T. Gronau, J Hubert, C. Prein, A Aszodi, H. Clausen-Schaumann, M. Amling, K. Puschel, W. Ruther, T. Pap, J. Bertrand,T. Hawellek: Effects of Tissue Calcification During Osteoarthritis on Extracellular Matrix and Cartilage Stiffness, Osteoarthritis and Cartilage, (2015), 23, A290. (abstract only)

G. Marchi, M. Jost, A. Steinkopff, C. Prein, A. Aszodi, H. Clausen-Schaumann, and J. Roths
All optical indentation probe for endoscopic diagnosis of osteoarthritis, Optical Methods for Inspection, Characterization, and Imaging of Biomaterials II, P. Ferraro, S. Grilli, M. RitschMarte, D. Stifter, (Eds.), Proceedings of SPIE, (2015), 9529, 95291A, http://dx.doi.org/10.1117/12.2184687

2014

Zare, H.H., Sudhop, S., Schamberger, F., Franz, G.
Microbiological investigation of an antibacterial sandwich layer system. Biointerphases, 9 (3) 031002, 2014.

Gronau, T; Hansen, U; Seidler, DG; Iozzo, RV; Aszodi, A; Prein, C ; Clausen-Schaumann, H; Kruger, K; Mooren, FC ; Bertrand, J; Pap, T; Bruckner, P; Dreier, R: Decorin-deficient mice are less prone to develop osteoarthritis after forced exercise, Osteoarthritis and Cartilage, (2014), 22, S12-S13

2013

Hadjipanayi, Ektoras; Schilling, Arndt F.
Hypoxia-based strategies for angiogenic induction The dawn of a new era for ischemia therapy and tissue regeneration. Organogenesis, 9(4), 261-272, 2013.

Hadjipanayi, E; Bauer, AT; Moog, P ; Salgin, B ; Kuekrek, H ; Fersch, B; Hopfner, U; Meissner, T; Schlüter, A; Ninkovic, M; Machens, HG; Schilling, AF.
Cell-free carrier system for localized delivery of peripheral blood cell-derived engineered factor signaling: towards development of a one-step device for autologous angiogenic therapy. Journal of Controlle Release, 169 (1-2), 91-102, 2013

Kauther, MD; Neuerburg, C; Wefelnberg, F; Bachmann, HS; Schlepper, R; Hilken, G; Broecker-Preuss, M; Grabellus, F; Schilling, AF; Jager, M; Wedemeyer, C, RANKL-associated suppression of particle-induced osteolysis in an aged model of Calcitonin and alpha-CGRP deficiency. Biomaterials, 34 (12), 2911-2919, 2013

E. Sariisik, D. Docheva, D. Padula, C. Popov, J. Opfer, M. Schieker, H. Clausen-Schaumann*, M. Benoit: Probing the Interaction Forces of Prostate Cancer Cells with Collagen I and Bone Marrow Derived Stem Cells on the Single Cell Level, PLoS ONE, (2013), 8(3): e57706, http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0057706 (full paper open access)

T. Gronau, U. Hansen; D. Seidler, R. Iozzo, A. Aszodi, C. Prein, H. Clausen-Schaumann, K. Kruger, F. Mooren, J. Pap; T. Pap, T, P. Bruckner, R. Dreier.
Decorin-Deficiency Alters Cartilage Stiffness and Attenuates The Development Of Osteoarthritis In Mice, Arthritis and Rheumatism, 65, S29, (2013)

2012

M. Saller, W.C. Prall, D. Docheva, V. Schönitzer, T. Popov, D. Anz, H. Clausen-Schaumann, W. Mutschler, E. Volkmer, M. Schieker, H. Polzer:
Increased stemness and migration of human mesenchymal stem cells in hypoxia is associated with altered integrin expression. Biochemical and Biophysical Research Communications, 423, 379-385, (2012)

Hadjipanayi, E; Cheema, U; Hopfner, U; Bauer, A; Machens, HG; Schilling, AF
Injectable system for spatio-temporally controlled delivery of hypoxia-induced angiogenic signalling. Journal of Controlle Release, 161 (3), 852-860, 2012

Patents

J. Roths, H. Clausen-Schaumann, G. Marchi, A. Aszodi: Indentierungsvorrichtung mit piezoelektrischem Stellelement, DE 10 2015 003 433.2

Labor-Homepage:

Raum:

C200

Tel:

089/1265--3671

Laborleitung:

Dr. Stefanie Sudhop
Tel.: 089/1265-1682
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Korrespondierend:

Prof. Dr. Hauke Clausen-Schaumann
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Dr.-Ing. Alfred Fuchsberger
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Belegschaft:

M.Sc. Tanja Becke
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M.Sc. Amelie Erben
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M.Sc. Lutz Fleischhauer
Tel.: 089/1265-3671
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M.Sc. Bastian Hartmann
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Conny Hasselberg-Christoph
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Verantwortlich für die Angaben der Laborseite: CS. Letzte Änderung: 2019-07-24 09:58:07

 

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